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Plant Biotechnology Journal:宁波大学陈剑平院士/孙宗涛团队揭示R2R3型MYB转录因子OsMYB4P通过调控JA信号增强水稻广谱抗病毒能力

近日,《Plant Biotechnology Journal》杂志在线发表了由农产品质量安全全国重点实验室(宁波大学)陈剑平院士/孙宗涛团队完成的题为“JA-responsive R2R3-Type MYB transcription factor OsMYB4P confers broad-spectrum antiviral immunity in Rice”的研究论文。该研究报道了一种R2R3型MYB转录因子OsMYB4P通过激活茉莉酸(JA)信号通路赋予水稻广谱抗病毒能力,并解析了病毒蛋白如何靶向其功能实现反防御,为植物激素信号与抗病毒机制之间的交叉调控提供了新见解。

水稻是我国重要的粮食作物,生长期间常遭受如南方水稻黑条矮缩病毒(SRBSDV)和水稻条纹病毒(RSV)等多种病毒侵染,严重影响水稻的产量与品质。植物激素,尤其是JA信号通路在水稻抗病毒过程中扮演重要角色(Han et al., 2020; Huang et al., 2024)。当水稻受到病毒侵染会诱导JA合成,JA通过促进茉莉酸ZIM结构域(JAZ)蛋白降解,从而释放转录因子(TFs)以激活JA介导的防御相关基因的表达。在JA响应通路中,MYC类转录因子的功能已被深入研究,而MYB家族作为植物中广泛分布的转录因子,在JA抗病毒信号中的作用鲜有报道(Huang et al., 2017; Song et al., 2011; Qi et al., 2011)。在本研究中,农产品质量安全全国重点实验室(宁波大学)陈剑平院士/孙宗涛团队明确了一种JA响应的R2R3型MYB转录因子OsMYB4P通过调控JA信号介导广谱抗病毒免疫。全文主要研究结果如下:

1.OsMYB4P正向调控水稻对SRBSDV和RSV的抗性

基于酵母双杂交(Y2H)、免疫共沉淀(Co-IP)和双分子荧光互补(BiFC)等实验发现,OsMYB4P分别与SRBSDV编码的SP8和RSV编码的P2病毒蛋白存在互作关系。进一步通过转基因植株人工接毒实验验证发现,过表达OsMYB4P(OE-OsMYB4P)显著增强水稻对SRBSDV和RSV的抗性,而敲除突变体(osmyb4p)则表现出更强的易感性(图1)。该结果表明OsMYB4P正向调控水稻广谱抗病毒免疫。

图1 OsMYB4P正向调控水稻对SRBSDV和RSV的抗性

2.OsMYB4P通过激活JA信号通路介导抗病毒免疫

为探究OsMYB4P介导抗病毒免疫的分子机制,我们对RSV感染的OE-OsMYB4P与对照植株进行转录组(RNA-seq)分析。结果显示,在OE植株中有421个特异上调基因,富集于防御反应和JA生物合成通路,其中包括JA合成基因CM-LOX1等。功能验证发现,OsMYB4P定位于细胞核,并可作为转录激活因子,直接结合CM-LOX1启动子中的ACCGGT顺式元件激活其表达(图2 a,b和c)。此外,MeJA处理显示,过表达OsMYB4P增强了水稻对JA的敏感性,敲除突变体则响应减弱,说明OsMYB4P是JA信号的正向调控因子(图2 d,e和f)。

图2 OsMYB4P作为转录激活因子正向调控JA信号通路

进一步研究表明,OsMYB4P还可与JA通路抑制子OsJAZ9与OsJAZ11发生蛋白互作,且后者显著抑制OsMYB4P的转录激活能力。这一特性与典型JA响应转录因子一致:JA响应的转录因子普遍作为JAZ蛋白的直接靶标,受到其转录抑制以维持激素稳态。

图3 OsJAZs与OsMYB4P互作并抑其转录激活活性

3.病毒蛋白SP8/P2通过干扰OsMYB4P功能抑制JA信号,助力病毒免疫逃逸

为实现有效侵染,病毒通常会编码相关致病蛋白以对抗寄主免疫,前期研究发现,SRBSDV与RSV分别编码的SP8和P2病毒蛋白虽进化路径独立,却共同进化出保守的转录抑制策略,通过挟持宿主蛋白以抑制免疫响应(Li et al., 2024)。该研究进一步发现,SP8和P2不仅可与OsMYB4P直接互作,还可与JA通路抑制因子OsJAZ11协同作用,显著抑制OsMYB4P的转录激活能力。这表明病毒蛋白并非单独发挥抑制功能,而是招募宿主共抑制因子形成复合物,增强对寄主免疫的抑制效应(Li et al., 2021)(图3)。此外,SP8/P2还可破坏OsMYB4P的自互作能力,降低其蛋白稳定性和DNA结合活性,从多个层面削弱OsMYB4P在JA信号中的作用,最终抑制JA通路并促进病毒侵染(图4)。

图4 病毒蛋白SP8/P2干扰OsMYB4P的DNA结合能力和蛋白质稳定性

总结而言,水稻在病毒侵染时会迅速激活JA信号通路,JA与JAZ抑制因子结合并促进其降解,释放出转录因子OsMYB4P,从而启动防御基因表达,增强寄主抗病毒免疫(图4h)。然而,病毒为实现反防御,通过编码SP8或P2病毒蛋白靶向OsMYB4P,破坏其自互作,削弱蛋白稳定性、转录激活活性与DNA结合能力,进而抑制JA信号通路,实现自身侵染扩展(图4h)。本研究不仅揭示了OsMYB4P作为JA信号转录因子在广谱抗病毒中的关键作用,还解析了病毒蛋白通过干扰OsMYB4P功能抑制JA通路的共性致病策略,为水稻抗病毒育种提供了新的理论基础与靶点资源。

农产品质量安全全国重点实验室(宁波大学)硕士研究生卢明敏、何倩倩和王国大为该论文的共同第一作者,李雁军副研究员和孙宗涛研究员为共同通讯作者,陈剑平院士提供了重要指导和支持。该项研究得到了国家重点研发计划、国家自然科学基金、浙江省自然科学基金、宁波市重点研发计划等项目的资助。

原文链接:http://doi.org/10.1111/pbi.70246

References:

Han, K., Huang, H., Zheng, H., Ji, M., Yuan, Q., Cui, W., Zhang, H. et al. (2020) Rice stripe virus coat protein induces the accumulation of jasmonic acid, activating plant defence against the virus while also attracting its vector to feed. Mol. Plant Pathol. 21, 1647–1653.

Huang, C., Liu, Q., Qi, Q., Gao, C., Li, L., Li, Y., Chen, J. et al. (2024) The phytohormone jasmonic acid is involved in rice resistance to Southern rice black-streaked dwarf virus. Crop J. 13, 23–30.

Huang, H., Gao, H., Liu, B., Qi, T., Tong, J., Xiao, L., Xie, D. et al. (2017) Arabidopsis MYB24 regulates jasmonate-mediated stamen development. Front. Plant Sci. 8, 1525.

Li, L., Chen, J. and Sun, Z. (2024) Exploring the shared pathogenic strategies of independently evolved effectors across distinct plant viruses. Trends Microbiol. 32, 1021–1033.

Li, L., Zhang, H., Chen, C., Huang, H., Tan, X., Wei, Z., Li, J. et al. (2021) A class of independently evolved transcriptional repressors in plant RNA viruses facilitates viral infection and vector feeding. Proceedings of the National Academy of Sciences 118, e2016673118.

Qi, T., Song, S., Ren, Q., Wu, D., Huang, H., Chen, Y., Fan, M. et al. (2011) The Jasmonate-ZIM-domain proteins interact with the WD-Repeat/bHLH/MYB complexes to regulate Jasmonate-mediated anthocyanin accumulation and trichome initiation in Arabidopsis thaliana. Plant Cell 23, 1795–1814.

Song, S., Qi, T., Huang, H., Ren, Q., Wu, D., Chang, C., Peng, W. et al. (2011) The jasmonate-ZIM domain proteins interact with the R2R3-MYB transcription factors MYB21 and MYB24 to affect jasmonate-regulated stamen development in Arabidopsis. Plant Cell 23, 1000–1013.

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